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蛋白提取实验步骤
蛋白提取实验步骤:
1、细胞总蛋白提取
A、对于悬浮细胞: 离心收集细胞,每106细胞加250 ul RIPA(在使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂),振荡。如果需要提高蛋白浓度,可以适当减少细胞总蛋白提取试剂体积。
B、对于贴壁细胞:
a、用TBS冲洗细胞2-3次。最后一次http://www.unjs.coM彻底吸干残留液。
b、加入适当体积的 RIPA(使用前数分内加入蛋白酶抑制剂)于培养板、瓶内3-5分钟。期间反复晃动培养板、瓶,使试剂与细胞充分接触。
c、用细胞刮刀将细胞及试剂刮下,收集到1.5ml离心管中。
C、冰浴30min,期间用移液器反复吹打,确保细胞完全裂解。
D、12000g离心5min,收集上清,即为总蛋白溶液。
2、组织蛋白提取:
A、组织块用冷TBS洗涤2-3次,去除血污,剪成小块置于匀浆器。加入10倍组织体积本试剂(使用前数分钟内加入蛋白酶抑制剂)冰上彻底匀浆。如果需要提高蛋白浓度,可以适量减少该试剂体积。
B、将匀浆液转移至1.5ml离心管中,振荡。冰浴30min,期间用移液器反复吹打,确保细胞完全裂解。
C、12000g离心5min,收集上清,即为总蛋白溶液。
注意事项
1、组织尽可能新鲜,若不能及时提蛋白,组织标本应保存在-80℃冰箱,并避免反复冻融。
2、全程必须在冰上进行,避免蛋白降解。
3、蛋白酶抑制剂在水溶液中不稳定,需在RIPA使用前数分钟加入蛋白酶抑制剂。
4、裂解过程中如有溶液粘稠现象可用移液器(200μl)反复吹打,或再加入适量裂解液以保证充分裂解。
5、总蛋白溶液不稳定(蛋白酶依旧有活性)可在-80℃短时间保存,建议立即加入蛋白上样缓冲液变性后与-20℃保存,避免反复冻融。
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